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白血病抑制因子在生殖中的研究概况

作者:一生健康    文章来源:一生健康    更新时间:2008-3-16 16:38:50

【关键词】  ,白血病抑制因子

【摘要】  白血病抑制因子(LIF)是一种具有广泛生物学功能的细胞因子,它主要通过与其受体(LIF-R)结合后发挥作用。目前认为LIF是调节卵泡生长发育,胚胎生长、发育、分化、着床等方面的关键因子之一,本文就其在生殖方面的重要作用进行综述。

  【关键词】  白血病抑制因子;生殖
  
    白血病抑制因子(leuckemia inbibitory factor,LIF)为白介素6(IL-6)家族中一员, 有6种白细胞介素的多向性的细胞活素,最早因它能抑制髓样白血病细胞系M 的增殖和促进其分化而得名[1]。LIF在不同的组织和细胞中有不同的生物学活性, 能调节胚胎干细胞、原始生殖细胞、肝细胞和内皮细胞等多种细胞的生长和分化。近来大量研究表明,LIF可影响生殖活动的多个环节,包括卵泡的生长发育,胚胎的生长、发育、分化、着床等方面,本文就其在生殖方面的重要作用综述如下。

  1  LIF及其受体的结构与信号传导

  LIF基因是单拷贝基因,在人和鼠分别位于第22号和第11号染色体上,由3个外显子和2个内含子组成。LIF受体复合物由一个低亲和性受体(LIFR)及一个高亲和性受体(gp130)组成。LIFR还有LIFRα及LIFRβ两条链。LIF先以较低亲和力与受体α结合,然后与gp130相互作用形成亲和力高的复合物,二聚体形成后gp130磷酸化,激活Janus酶,磷酸化下游的信号传导子及转录激活子(stat)蛋白,从而进入核内激活下游转录因子,产生一系列的生物效应。

  2  LIF与胚胎发育

  早在1988年Smith等就发现LIF能抑制胚胎干细胞(ES)的分化,并保持其增殖潜能。而重组LIF抑制了鼠胚芽细胞的变异,抑制原始外胚层形成,但可诱发原始内胚层分化。此结果证明,LIF在鼠早期胚泡成长与发展中起重要作用。1999年Chen在人和鼠着床前的胚泡中均发现有LIF及LIF受体的转录[2],同年Hirzel报道LIF表达缺失可导致斑点臭獾的胚泡滞育,而增加LIF的浓度则可使滞育的胚泡重新发育并着床。而且,RT-PCR检测LIF的浓度表明,胚泡滞育时LIF的浓度低于胚泡重新发育时的水平[3] ,证实LIF与胚泡发育有密切的联系。2004年Cheng[4]设计了在两胚胎原核阶段注入微量LIF抗敏感寡核苷酸以观察植入前胚胎的变化,发现随着注入剂量的增加,胚泡直径变小,胚胎发育到桑椹胚或胚泡阶段的比例逐渐降低,植入率也降低,而LIF的表达也随着注入剂量的增加而下降,补充外源性LIF后胚胎发育至4-细胞、桑椹胚及胚泡阶段的百分比升高,但比正常组还是略低。由此说明LIF对胚泡发育是起关键作用的,但LIF缺失的胚泡仍可发育至正常胚泡阶段,又同时证明LIF不是胚泡发育必需的。
   
  LIF还可以提高体外培养的人胚胎形成率,改善胚胎质量。1992年Steward[5]报道LIF缺乏的胚胎发育交杂和胚胎小。Penkov[6]研究对桑椹胚阶段在培养皿中添加不同剂量的LIF,结果显示,所有加入LIF的胚胎发育比对照组平均增加了3.16%,且植入时形成的胎盘也较好。这些证明LIF促进了胚胎的发育,是胚胎形成及发育中重要的细胞因子之一。

  在卵泡液中也检测到LIF的表达,并且在排卵前成熟卵泡中,LIF蛋白浓度极高。Northem原位杂交及RT-PCR研究臭獾发现其子宫产生两种LIFβ转录产物,其浓度在胚泡发育期升高,在胚泡激活后有所减少[7]。这些研究表明,LIF可促进胚胎发育,提高胚胎质量及存活力:而且LIF可能通过促进胚胎的滋养外胚层发育从而提高胚胎的着床能力,提高胚胎从外界获取营养的能力。

  3  LIP与胚胎着床

  不孕妇女导致不孕的原因很大程度上是因为着床失败。胚胎着床是胚泡与子宫内膜之间复杂的相互反应过程,许多实验证明,LIF参与着床过程,对胚泡孵化、子宫内膜容受性和滋养层的黏附都有明显关系。LIF在子宫内的表达已在不同哺乳动物得到证明。LIF mRNA的转录和蛋白翻译主要在子宫内膜腺上皮细胞中完成,然后将合成的蛋白分泌到子宫腔中发挥作用[8]。
  LIF在狨属增生期子宫内膜中表达缺失,在黄体中期子宫内膜腺体细胞基质中发现有LIF表达,在黄体中期达到最大强度,黄体晚期开始下降[9]。在人类[10]免疫染色法检测到LIF在子宫内膜腔上皮中表达最高,其次是腺上皮,基皮中最低,腔腺上皮LIF表达在滤泡期最低,围排卵期升高,黄体期表达最高,而在基质中则无明显周期性。

  LIF表达减弱或缺失可能导致不孕。基因重组技术发现LIF基因缺陷雌鼠能够排卵,其卵子也能受精,但胚泡不能正常植入和发育,如果转移到野生型假孕鼠中,则胚胎能正常植入和发育,说明LIF是动物胚泡植入过程中必需的[5]。王琳等[11]用免疫组化和原位杂效方法研究了人子宫内膜异位症(endometriosis ,E

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